
혈액은 우리 몸의 장기와 조직으로 산소 및 영양분을 공급할 뿐 아니라 노폐물을 제거함으로써 우리가 생존하는 데 필수적이며, 이러한 역할이 정상적으로 수행되기 위해서 혈액 순환이 원활하게 이루어지는 것이 중요하다. 여러 요인으로 인하여 혈관이 손상될 때, 우리 몸에서 지혈 반응이 촉진되며, 이를 통해 혈액 손실을 최소화시키고 정상적인 순환을 유지하는데, 혈소판 활성화 과정이 시발점이 된다(Jackson, 2011). 그러나, 혈소판이 비정상적으로 또는 과다하게 활성화되는 경우 뇌졸중, 뇌경색 및 동맥 경화증 등과 같은 혈전성의 심혈관 질환을 유발하게 된다(Schwartz et al., 1990). 그런 이유로 인해, 혈소판의 활성화를 조절함으로써 혈전 생성을 억제하는 물질을 찾고 개발하는 것이 심혈관 질환의 예방 및 치료에 중요하게 여겨진다.
혈관의 손상이 있을 때, 순환하던 혈소판이 병변으로 모여들고 혈소판 활성유도물질(ADP, collagen 및 arachidonic acid 등)를 통해 활성화된다. 이때, 혈소판 막의 phospho- lipase C가 활성화되어 phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate와 같은 인지질을 inositol 1,4,5-triphosphate (IP3)과 diacyl- glycerol (DG)로 가수분해되고, 생성이 증가된 IP3는 혈소판 내의 dense tubular system에 위치하는 Ca2+ 채널을 열어서 세포질 내 Ca2+ 농도가 강하게 증가시킨다(Payrastre et al., 2000). 그 결과 calcium/calmodulin 의존성 단백질로 알려진 myosin light chain 및 pleckstrin가 인산화시킴으로 혈소판 응집을 일으킨다(Nishikawa et al., 1980).
또한, 혈소판이 활성화되면서 혈소판 막의 인지질이 arachidonic acid로 가수분해되어 나오며, TXA synthase (TXAS) 및 cyclooxygenase-1 (COX-1)의 작용에 의해 TXA2로 전환이 일어난 후 혈소판으로부터 방출되어 나온다(Jennings, 2009). 혈소판 외부로 분비되어 나온 TXA2는 또 다른 혈소판들의 막 수용체에 결합되어 추가적으로 혈소판 자극하고 활성화를 촉진한다(Morello et al., 2009; Sabatine and Jang, 2000).
정상적으로 혈액 순환이 일어나고 있는 경우, 혈관 내피세포로부터 분비되는 prostanglandin I2과 nitric oxide는 혈소판 내 cAMP 또는 cGMP 생성을 유발하는데, cAMP 생성 증가는 protein kinase A (PKA)를 활성화시키고 cGMP 생성 증가는 protein kinase G (PKG)를 활성화시킨다. 이들 PKA와 PKG는 기질 단백질로 vasodilator stimulated phosphoprotein (VASP)이나 IP3 receptor (IP3R)를 인산화시키는 것으로 알려져 있다(Kim et al., 2014; Kim et al., 2015; Lee, 2017; Schwarz et al., 2001). IP3R의 인산화는 세포질로의 Ca2+ 동원을 억제시키는 것으로, VASP의 인산화는 αIIb/β3의 활성화를 낮춤으로써 actin filament의 신장을 저해하는 것으로 잘 알려져 있다(Cavallini et al., 1996; Quinton and Dean, 1992; Sudo et al., 2003; Laurent et al., 1999). 따라서, IP3R 인산화와 관련한 Ca2+ 동원 억제능과 VASP의 인산화와 관련한 αIIb/β3 활성 억제능은 항혈소판 물질을 평가하는데 중요한 요소이다.
Artemisinin은 효과적인 말라리아 치료제로 오랫동안 임상에서 사용되어온 전통 의학제이며, artemisinin과 그 파생물들에서 항말라리아 특성 뿐 아니라 항염증, 항알러지 및 항암 작용 등의 광범위한 치료 효과가 있음이 입증되었고, 이는 수많은 분자 표적의 조절과 관련된 것으로 보고되었다(Wang et al., 2019; Wong et al., 2017; Yao et al., 2018). 최근 연구들에서는 artemisinin과 그 유도체가 신경 보호 특성이 있고, 이는 다양한 뇌 장애에서 예방 및 치료 가능성이 있음이 보고되었다(Das et al., 2014; Xu et al., 2017; Zeng et al., 2017; Fang et al., 2019; Zhao et al., 2019). 또한, 어떤 연구에서는 artemisinin가 ERK1/2 & CREB & BCL-2 신호 경로를 활성화하여 허혈성 뇌졸중 유발로 인한 세포사멸을 약화시킨다는 것을 확인하기도 하였다(Peng et al., 2022).
뇌졸중과 동맥 경화증으로 대표되는 심혈관계 질환(CVD)는 혈소판 활성화와 깊은 관련이 있고, artemisinin과 유사한 구조를 가진
Avention Co. (Siheung, Korea)로부터 artemisinin을 구입하였다(Fig. 1). Chrono-Log Co. (PA, Havertown, USA)에서 collagen을 구입하였고, Cayman Chemical Co. (Ann Arbor, MI, USA)가 cAMP와 cGMP assay kit를 제공하였고, Fura 2-AM은 Invitrogen (Eugene, OR, USA)로부터 구입하였다. Anti-β-actin, anti-phospho-IP3R type I, anti-total VASP, anti-phospho-VASP Ser157, anti-phospho-VASP Ser239, anti-rabbit IgG-HRP-conjugate 등의 항체와 lysis buffer를 Cell Sig- naling (Beverly, MA, USA)에서 제공받았다. Thermos fisher Scientific Co. (Middlesex County, MA, USA)로부터 polyvinyl- idene difluoride (PVDF) membrane를 구하였고, Invitrogen Molecular Probes (Eugene, OR, USA)로부터 Fibrinogen Alexa Fluor 488 접합체 및 ECL (Enhanced chemiluminescence solution)를 입수하였다. 그 외에 사용된 시약들은 Sigma Aldrich Korea (Seoul, Korea)를 통해 구입하였다.
사람의 전혈에서 분리하여 제조한 농축혈소판 제제를 대한민국 수원에 위치한 대한적십자 혈액원의 승인을 거쳐 입수하였다. 관련된 논문의 방법을 따라 농축혈소판 제제를 1,650×g에서 8분간 원심분리하여 혈소판을 모은 후, 138 mM NaCl, 12 mM NaHCO3, 5.5 mM glucose, 2.7 mM KCl, 0.49 mM MgCl2 및 0.36 mM NaH2PO4를 포함한 현탁 완충액(pH 7.4)에 부유시키는 방법으로 혈소판을 세척하였고, 108 cells/mL 최종 농도로 혈소판 현탁액을 준비하였다(Ko et al., 2023). 낮은 온도에서 혈소판 응집이 일어나는 것을 방지하기 위해 전 과정을 실온의 상태에서 진행하였다. 실험 진행을 위해 남서울대학교 기관생명윤리 위원회로부터 승인(1041479-HR-201803-003)을 받았다.
혈소판 현탁액(108 cells/mL)에 다양한 농도의 artemisinin을 첨가하였고, 3분 동안 37℃에 둔 후, 2 mM CaCl2 및 응집 유도제를 첨가하여 5분 동안 응집을 유도하였다. 반응을 종료시키기 위해 동량의 EtOH를 첨가였고, cGMP 또는 cAMP ELISA kit (Cayman chemical, Ann Arbor, Michigan, USA)를 사용하여 cGMP 및 cAMP의 농도를 측정하였다.
농축혈소판에 Fura 2-AM (5 μM)를 첨가하여 37℃에서 60분 동안 교반시킨 후, 앞서 언급한 방법에 따라 108 cells/mL 농도의 혈소판 현탁액을 준비하였다. 준비된 혈소판 현탁액에 2 mM CaCl2 및 응집 유도제를 첨가하여 5분 동안 37℃에서 반응시키며, Fura 2가 방출하는 형광을 Fluorescence Spectrophotometer (F7000, Hitachi hightech, Seongnam, Korea)를 통해 측정하였다. 형광의 여기 파장을 340 nm에서 380 nm까지 0.5초 간격으로 증가시켰고, 510 nm의 방출 파장을 설정하였다. 측정된 형광 값은 Grynkiewicz에 의해 기술된 방법에 따라 Ca2+의 동원 양으로 계산하였다(Grynkiewicz et al., 1985).
혈소판의 반응을 1x lysis buffer를 사용하여 종료하였고, 용해된 혈소판 현탁액의 단백질 농도를 BCA protein kit (Pierce Biotechnology, Rockford, IL, USA)를 통해 측정하였다. 각 시료가 20 μg의 단백질을 포함하도록 희석하여 8% SDS-PAGE를 통해 전기영동하였다. 분리된 단백질은 PVDF membrane으로 옮긴 후, 1:1,000 희석 배율의 1차 항체에서 하루 동안 반응하였고, 1:2,000 희석 배율의 2차 항체에서 1시간 동안 반응하였다. ECL 시약(Thermo Fisher Scientific, Seoul, Korea)에 반응하여 단백질 band를 시각화하였다.
혈소판 현탁액을 Alexa Fluor 488-fibrinogen (20 μg/mL)와 함께 처리한 후, 2 mM CaCl2 및 응집 유도제를 첨가하여 5분 동안 반응을 유도하였다. 동량의 0.5% 파라포름알데하이드를 포함하는 phosphate buffer (pH 7.4)를 첨가하여 반응을 종료하였고, 모든 과정에서 빛이 차단되도록 하였다. Fibrinogen의 결합 정도는 BD Bioscience (San Jose, CA, USA)의 FACS 장비(유세포 분석기)에서 측정되었고, 결과 값을 Cell-Quest 소프트웨어(BD Biosciences)를 이용하여 계산하였다.
농축혈소판이 시험관 벽에 부착되어 활성화 되지 않게 하기 위하여 polyethylene 재질의 시험관에 넣은 후, 2 mM CaCl2 및 thrombin (0.05 U/mL)을 첨가하여 37℃에서 20분 동안 반응이 일어나게 하였다. 시험관에서 fibrin 기반의 clot이 형성된 결과를 디지털 카메라로 사진 촬영하였다. ImageJ (v1.46, National Institutes of Health, Bethesda, MD, USA)를 이용해서 촬영된 이미지로부터 응고된 영역을 계산하였고 혈전 형성 정도를 정량하였다.
모든 실험 결과를 평균 ± 표준편차로 표현하였고, Student's
본 연구에서는 세포질 내로 동원되는 Ca2+ 양을 감소시킴으로 혈소판 활성화에 반대 효과를 미치는 것으로 알려진 cAMP 및 cGMP 수준에 대한 artemisinin의 영향을 조사하였고, Fig. 2A에 나타낸 연구 결과에 따르면 artemisinin은 cAMP 생성을 3.92±0.41 pmoL/108 cells에서 7.70±1.22 pmoL/108 cells로 크게 증가시켰으나, cGMP 생성에서는 유의한 증가를 보이지 않았다(Fig. 2B). 이러한 결과를 통해 artemisinin이 cGMP보다는 cAMP의 생성 증가를 일으킴으로써 혈소판 활성화를 억제한다는 것을 확인하였다.
혈소판 활성화 및 응집에 기여한다고 알려진 세포 내로의 Ca2+ 동원에 artemisinin이 어떤 영향을 미치는 지 평가하였다. Fig. 3A는 collagen 자극으로 인해 [Ca2+]i가 100.9±1.1 nM에서 681.1±23.2 nM으로 크게 증가했음을 보여준다. 그러나 artemisinin (100~500 μM)을 투여하였을 때, collagen에 의해 유발된 [Ca2+]i의 증가가 유의하게 약화되었다(Fig. 3A). 또한, 본 연구에서는 [Ca2+]i 조절에 관여하는 수용체인 IP3R의 인산화에 미치는 artemisinin의 효과를 조사하였고, Fig. 3B에 도시된 바와 같이, collagen으로 자극된 혈소판에서 artemisinin은 IP3R 인산화의 농도 의존적인 증가를 일으켰다. 이러한 결과는 artemisinin이 IP3R 인산화를 통해 세포 내로 Ca2+의 동원을 감소시켰다는 것을 시사한다.
본 연구에서, Fig. 2에서 나타난 바와 같이 artemisinin이 collagen으로 유도한 혈소판에서 cAMP 농도를 유의적으로 증가시키는 것을 확인하였다. 또한, artemisinin이 collagen으로 유도한 혈소판에서 VASP 인산화 조절에 관여하는지 확인하였고, Fig. 4는 artemisinin이 VASP Ser157의 인산화를 유의하게 증가시키는 반면, VASP Ser239에서는 유의미한 효과가 관찰되지 않았음을 보여준다. 특히, 100 μM 이상에서 artemisinin가 통계적 유의성을 가지며 효과를 나타내는 것이 관찰되었으며, 이는 artemisinin에 의해 유도된 향상된 cAMP 생성이 VASP Ser157 인산화를 유의하게 증가시킨다는 것을 나타낸다.
본 연구에서는 artemisinin가 매개하는 VASP Ser157 인산화의 증가가 αIIb/β3 수용체에 대한 fibrinogen 결합을 저해하는지 확인하였다. Collagen 자극으로 αIIb/β3 수용체에 대한 fibrinogen의 결합률이 82.8±1.4%로 높아졌다(Fig. 5A-b, 5B). 그러나, Fig. 5A-f 및 5B가 보여주는 것과 같이 artemisinin은 fibrinogen의 결합력을 농도 의존적 억제하였다. 특히, 500 μM 농도의 artemisinin은 fibrinogen 결합을 78.0%까지 억제시키는 것으로 확인되었다(Fig. 5A-f, 5B). 이러한 결과는 αIIb/β3 수용체에 결합하는 fibrinogen에 대한 artemisinin의 억제 효과를 보여주며, 이는 VASP Ser157 인산화에 대한 영향에 기인되는 것으로 사료된다.
혈소판 응집 유도제에 의해 혈소판이 활성화되고 응집이 촉발되면서 fibrin 응고를 형성하는 것을 억제하는 물질을 확인한 다른 연구에서, 응집 유도제로 thrombin을 사용하였고(Shin et al., 2019), 다른 응집 유도제에 비하여 thrombin이 응고작용까지 유발할 수 있음을 참고하여, 본 연구에서는 thrombin로 유도한 fibrin 응고 형성에 미치는 artemisinin의 효과를 평가하였다. Fig. 6A에 제시한 바와 같이, thrombin은 fibrin 응고 형성을 강하게 유발하였다. 그러나 다양한 용량(100, 300 및 500 μM)의 artemisinin를 처리한 경우 fibrin 응고 형성이 농도에 따라 감소하는 것으로 나타났고, artemisinin의 억제율은 각각 28.5.6%, 33.5% 및 59.4%인 것을 확인할 수 있었다(Fig. 6B). 이러한 결과들은 혈전 형성을 효과적으로 저해하는 artemisinin의 효력을 나타내며, artemisinin이 혈전 형성을 방해하는 효과적인 물질임을 시사한다.
기존에 임상에서 많이 활용되고 있는 항혈소판제로는 aspirin과 ozagrel이 있으며, 이들은 각각 COX-1와 TXAS의 효소반응을 저해하여 TXA2 생성을 억제하는 물질들로 알려져 있다(Cipollone et al., 1997; Patrono, 2001). 또한, triflusal, cilostazol, dipyridamole과 같은 PDE 억제제들도 임상적으로 cyclic nucleotides의 생산을 증가시키는 항혈소판제로 많이 사용된다(Menshikov et al., 1993). 본 연구에서, artemisinin은 cAMP의 생성을 증가시키는 항혈소판 물질로서 가능성이 있으며, 그 기전을 확실히 밝히기 위해서는 추가적인 연구가 필요하다. 또한, 본 연구에서 사용한 artemisinin의 효과 농도가 임상에서 사용되는 다른 제제들에 비하여 높은 편이기는 하지만, 인공합성 물질들과 다르게 천연물 유래의 성분이며 사람 혈소판에서 독성이 없었던 것으로 비추어 볼 때, 위염증 및 위출혈 등의 부작용이 덜할 것을 기대해 볼 수 있다. 이를 명확하게 확인하기 위하여 artemisinin을 동물식이 했을 때의 항혈전 효과 및 위장관계에 미치는 부작용들을
Funding for this paper was provided by Namseoul University year 2024.
No conflict of interest.